Professionnels de Santé
Manuel de Prélèvement
Document de référence pour la prescription et la réalisation des prélèvements biologiques au Laboratoire Multi-sites Paofai.
À destination des infirmiers libéraux, médecins et professionnels de santé prescripteurs.
- Résultats transmis directement au prescripteur
- Délais de rendu optimisés
- Accrédité COFRAC — Norme ISO 15189
étape 1
Prise en charge
Documents nécessaires à la prise en charge
Retrouvez l'ensemble de nos documents et guides à destination des médecins, infirmiers et professionnels de santé prescripteurs.
Ordonnance en cours de validité
Moins de 6 mois. Sans ordonnance, les frais sont à la charge du patient.
Ordonnance en cours de validité
Moins de 6 mois. Sans ordonnance, les frais sont à la charge du patient.
Carte CPS à jour
Ou attestation de droits de la sécurité sociale valide.
Fiche de transmission
Obligatoire pour les prélèvements réalisés au domicile du patient.
La fiche de transmission correctement remplie est capitale pour une bonne prise en charge. Elle doit comporter : identité complète du patient avec date de naissance et numéro DN, date et heure de prélèvement, identité du préleveur, renseignements cliniques, nombre et type de tubes prélevés.
1.1 — Renseignements spécifiques par analyse
Certains examens nécessitent des renseignements cliniques particuliers pour une interprétation pertinente des résultats.
| Analyse | Renseignements à fournir |
|---|---|
| Clairance créatinine (Cockroft) | Poids du patient |
| Hormonologie (HCG, FSH, LH, E2…) | Date des dernières règles ou jour du cycle |
| Dosage de médicaments | Nom du médicament et posologie — Date et heure de la dernière prise — Date et heure du prélèvement |
| Hémostase (INR) | Nature des anticoagulants et posologie |
| Sérologie hépatites | Vaccination antérieure, notion de voyage, visée diagnostique, grossesse |
| Prélèvements bactériologiques | Fièvre, traitement antibiotique en cours ou récent, immunodépression, but de l'analyse, type et origine du prélèvement |
| Parasitologie | Fièvre, voyage avec date — Paludisme (URGENCE+++) : prophylaxie éventuelle |
| Hémocultures | Température du patient — Heure et localisation du prélèvement |
| Analyses génétiques (HLA, mutation…) | Consentement obligatoire — Signature du patient et du clinicien |
| HT21 (Trisomie 21) | Prescription avec consentement signé — Poids le jour du prélèvement — Bordereau CHT complété par le prescripteur |
| RAI | Grossesse — Injection de Rophylac (anti D) avec date — Rhésus |
1.2 — Groupes sanguins et examens immuno-hématologiques
Règle absolue : Tout patient doit faire l'objet de deux déterminations de groupe sanguin ABO Rh D, effectuées à des moments différents, de préférence par deux personnes différentes. L'étiquetage des tubes ne doit jamais être effectué à l'avance — il se fait immédiatement après chaque prélèvement.
étape 2
Technique
Prélèvement des échantillons sanguins
2.1 — Étapes de la prise de sang
Désinfection des mains
lavage au savon antiseptique et/ou solution hydro-alcoolique. Port des gants.
Identification positive du patient
le patient doit déclarer lui-même son identité et sa date de naissance.
Vérification des conditions de prélèvement
état de jeûne, horaire, clinique, procédurale.
Sélection des tubes
nature et nombre en fonction des examens prescrits. Vérifier la date de péremption.
Pose du garrot
juste avant le prélèvement, durée inférieure à 1 minute si possible.
Réalisation du prélèvement
après désinfection soigneuse. Ponction franche et rapide. Si cathéter ou fistule, prélever le bras opposé.
Respecter l'ordre de remplissage
des tubes préconisé par le laboratoire (voir tableau ci-dessous).
Respecter le volume de remplissage
notamment pour les tubes avec anticoagulant liquide (tube citrate : remplir jusqu'à l'indicateur).
Homogénéisation
quelques retournements successifs lents. Ne jamais secouer violemment (risque d'hémolyse). Il est strictement interdit de transvaser d'un tube à l'autre.
Élimination immédiate de l'aiguille
dans le collecteur DASRI prévu à cet effet.
2.2 — Ordre de prélèvement des tubes
Le tube citrate (bleu) doit être rempli jusqu'au maximum (flèche ou anneau dépoli). Un tube mal rempli entraîne le refus du prélèvement pour l'hémostase.
2.3 — Conduite à tenir en cas d'AES
AES — Accident d'Exposition au Sang
- Piqûre ou blessure : ne pas faire saigner. Laver à l'eau et au savon, rincer, sécher. Antisepsie par trempage 10 min dans du Dakin ou alcool à 70°. Projection muqueuses/œil : rincer abondamment 10 min.
- S'enquérir du statut sérologique du patient source.
- Contacter immédiatement le Dr Lam N Guyen au Taaone — tél. 40 48 62 62 ou 87 70 87 47 — pour évaluation du risque et prophylaxie éventuelle (à débuter dans les heures suivantes).
- Effectuer une déclaration d'accident de travail.
- Suivi sérologique jusqu'au 6ème mois — sérologies au 3ème mois (ou 4ème si traitement prophylactique).
étape 3
Acheminement
Transport des échantillons
Les prélèvements doivent être conservés entre 15 et 25°C. Protéger des températures élevées dans les véhicules. Une glacière avec pain de glace est recommandée.
Par le préleveur
Acheminement direct au laboratoire par la personne ayant réalisé le prélèvement.
Tournées de collecte
Collecte effectuée par le service de tournées du laboratoire — contacter le laboratoire pour les horaires.
Dépôt chez un collaborateur
Dépôt possible chez les collaborateurs agréés (pharmacie, cabinet médical…).
1 sachet = 1 patient. Urgences vitales : les échantillons doivent être remis en main propre au personnel du laboratoire. Préciser oralement qu'il s'agit d'une urgence vitale.
étape 4
Identitovigilance
Identification des tubes
Les prélèvements doivent être conservés entre 15 et 25°C. Protéger des températures élevées dans les véhicules. Une glacière avec pain de glace est recommandée.
Examens à réaliser chez vous
- Identification immédiatement après le prélèvement, sur les lieux
- Ne jamais pré-identifier les tubes à l'avance
- Nom, prénom et date de naissance sur chaque tube
- Étiquette sur le flacon, jamais sur le bouchon
- Hémocultures : étiquette ne couvrant pas le code barre
Spécificités
- Écouvillons : étiquette sur l'étui, pas sur le sachet
- Épreuves dynamiques : noter impérativement l'heure de prélèvement sur chaque tube
étape 5
Qualité
Importance de la phase pré-analytique
"La qualité du résultat dépend de la qualité du prélèvement"
Principales non-conformités et décisions
étape 6
Microbiologie
Préconisations prélèvements non sanguins
ECBU
Toilette intime soigneuse. Recueillir uniquement le 2ème jet dans un flacon avec poudre après conservateur. Idéalement le matin. Apporter au laboratoire dans les 2h.
- Fiche ECBU
Urines de 24h
Récupérer le récipient au laboratoire. Commencer le recueil après vidange matinale. Conserver au frais entre les recueils. Acheminer rapidement.
- Fiche 24h
Prélèvements sur écouvillon
Écouvillon gélosé obligatoire (sauf mycologie : squames en flacon stérile). Milieu de transport liquide pour virologie — récupérer au laboratoire.
- Fiche prélèvements
Selles (coproculture, parasitologie)
Flacon stérile. Réaliser si possible lors des épisodes diarrhéiques. À distance de tout traitement. Acheminer rapidement à température ambiante.
- Fiche selles
Spermoculture / Spermogramme
Recueil en flacon stérile par masturbation. Abstinence de 3 jours pour spermogramme. Rendez-vous obligatoire au laboratoire de Paofai : 40 461 155.
- Fiche sperme
Expectorations
Recueil le matin au réveil après rinçage bucco-dentaire. Effort de toux. Flacon stérile. Éviter la salive. Acheminer rapidement. BK : compléter la fiche spécifique.
- Fiche BK
PCR Chlamydiae, Gonocoque, mycoplasmes
- Fiche PCR
étape 7
Protocoles
Tests dynamiques
- Test à la Dexaméthasone (Dectancyl®)
- J0 à 8h : prélèvement cortisol plasmatique.
- J0 à minuit : ingestion de 1mg de Dexaméthasone (Déctancyl® 0,5mg × 2) prescrit par le médecin.
- J+1 à 8h : nouveau prélèvement cortisol.
- HGPO femme enceinte (24–28 SA)
- À jeun depuis 12h. Patiente allongée au repos.
- T0 : prélèvement à jeun sur tube fluoré (gris).
- Faire ingérer 75g de glucose liquide en moins de 5 minutes.
- Prélèvements sur tube fluoré à T+60 min et T+120 min.
- Hyperglycémie provoquée — HGPO standard
- Patient à jeun depuis 12h. Demander d'arrêter de fumer pendant l'épreuve. Mettre le patient au repos, allongé si possible.
- Prélèvement T0 à jeun sur tube fluoré (gris).
- Faire boire la quantité de glucose prescrite en moins de 10 minutes.
- Prélèvements sur tube fluoré selon le protocole prescrit. Noter l'heure sur chaque tube
- Test au Synacthène® immédiat
- À jeun depuis 12h, au repos depuis 30 min. Corticoïdes arrêtés 12–24h avant.
- Entre 8h30 et 9h30 : prélèvement T0 cortisol (noter l'heure).
- Injection immédiate de Synacthène IM ou IV (médecin ou infirmier).
- ATTENTION :mettre T0 et T+60 dans le même sachet avec heures notées sur les tubes.
- Test à la LH-RH
- À jeun depuis 12h, sans thé ni café. Femme : aménorrhée ou début de phase folliculaire (J3-J5), sans traitement œstroprogestatif depuis ≥ 1 mois.
- T-15 : prélèvement FSH et LH sur tube sec ou hépariné.
- T0 : prélèvement puis injection IV de LH-RH prescrite (médecin ou infirmier).
- Prélèvements à T+15, T+30, T+60, T+120 min. Heure notée sur chaque tube.
étape 8
Communication
Transmission des résultats
Au prescripteur
- Serveur de résultats hospitalier (clinique Paofai et hôpital Taravao)
- Messagerie électronique sécurisée (Apicrypt)
- Compte-rendu papier distribué par coursier
- Courrier postal (médecins de ville)
- Fax ou téléphone sur demande ou à l'initiative du biologiste
Au patient
- Remis personnellement sur papier au laboratoire
- Accès via le serveur internet sécurisé labo.lam.pf
(demande à l'enregistrement) - Communication téléphonique par le biologiste en cas de nécessité